Mycoplasma pneumonie y fermentans

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Published on December 10, 2016

Author: Marlenpmtz

Source: slideshare.net

1. Mycoplasma pneumoniae y Mycoplasma fermentans Marlene Rubí Pérez Martínez BENEMERITA UNIVERSIDAD AUTONOMA DE PUEBLA FACULTAD DE CIENCIAS QUIMICAS DEPARTAMENTO DE MICROBIOLOGIA BACTERIOLOGIA I

2. C l a s i f i c a c i o n t a x o n o m i c a Especie: M. pneumoniae M. fermentans Genero: Mycoplasma Familia: Mycoplasmataceae Orden: Mollicutes

3. G e n e r a l i d a d e s • Carecen de pared celular • Aerobios estrictos* • Aerobios y anaerobios facultativos* • Tienen membrana plasmática • Capsulados • Altamente pleomorfos • Móviles • Extremadamente sensibles • Genoma pequeño • Se reproducen por fisión binaria Figura 1: Microfotografía que muestra dos Mycoplasma pneumoniae

4. E s t r u c t u r a b a c t e r i a n a Figura 2: Un esquema longitudinal que representa la arquitectura celular de Mycoplasma pneumoniae. La imagen no está a escala

5. F a c t o r e s d e v i r u l e n c i a • Ausencia de pared celular • Proteína P1 • Evasión de respuesta inmune • Intercambio de antígenos con la célula hospedera • Variación de antígenos • Evasión de la fagocitosis • Ineficiencia para producir la producción de anticuerpos • Producción de grandes cantidades de ácido del metabolismo de la glucosa • Producción de peróxido de hidrogeno

6. M e c a n i s m o d e p a t o g e n i c i d a d • Se adhiere al epitelio mediante una estructura de anclaje (adhesina P1) con los receptores de la glucoproteína de acido salicílico en la base de los cilios de las células epiteliales • Ciliostasis tras la que son destruidos en primer lugar los cilios y posteriormente las células del epitelio ciliar • Contaminación de vías aéreas inferiores e irritación mecánica • Actúa como un superantigeno y estimula la migración de células inflamatorias al lugar de la infección

7. Especies de Mycoplasmas estudiadas Genero y especie Lugar de aislamiento Implicación patológica M. fermentans Genito urinario , sangre, tejidos, orofaringe Enfermedad multisistemica M. Pneumoniae Vías respiratorias Infección respiratoria superior

8. P a t o g e n i a M. pneumoniae Neumonía atípica ( periodo de incubación 2-3 semanas) • Cefalea y malestar general • Tos paroxística • Dolor ardoso de garganta • Fiebre • Esputo de escaso a abundante • Estertores roncantes o silbantes Mecanismo de trasmisión directa por gotas de esputo y secreciones nasales Figura 3:radiografía del tórax posterior en el curso de una infección por Mycoplasma pneumoniae.

9. P a t o g e n i a M. fermentans • Microbiota normal del tracto urogenital • Patologías del tracto genital humano • Esclerosis múltiple • Lupus • Artritis • Fibromialgia (síndrome de fatiga crónica)

10. E p i d e m i o l o g í a M. pneumoniae • Distribución cosmopolita • Causa epidemias esporádicamente • Endémico en áreas urbanas y rurales • brotes epidémicos cada 4 a 7 años. En el pasado se consideraba que la incidencia en el grupo de menores de 5 años era muy baja, pero actualmente debe considerarse como agente etiológico importante en este grupo de edad M y c o p l a s m a p n e u m o n i a e Rango de edad < 6 meses < 5 años 5-9 años 10-14 años Incidencia de casos Infrecuente + +++ ++

11. E p i d e m i o l o g í a M. fermentans • Afecta principalmente a personas con SIDA • Cosmopolita • Oportunista 61% 39% 39% Incidencia de M. fermentans en pacientes con SIDA No infectados Infectados 20 % 80%

12. T o m a d e m u e s t r a Toma de muestra orofaríngea Toma de muestra de cérvix y uretra Toma de muestra sanguínea venosa Biopsia LCR Liquido sinovial

13. T r a n s p o r t e • Las muestras deben mantenerse en un medio apropiado El Medio de Transporte de Vircell • El tiempo de transporte no debe exceder las 4 horas. • Sin embargo, cuando el traslado se prolonga, la viabilidad de mycoplasma se puede mantener con temperaturas de aproximadamente 4°C.

14. P r u e b a s d i a g n o s t i c a s Prueba valoración Microscopia La prueba no es útil para los microrganismos debido a que no tienen pared celular y no se tiñen con los reactivos convencionales Cultivo La prueba es lenta (2-6 semanas para dar un resultado positivo) y no es sensible, la mayoría de los laboratorios no disponen Diagnostico molecular Las pruebas de identificación basadas en PCR disponen de una alta sensibilidad Serología Fijación del Complemento Títulos de anticuerpos frente antígenos glucolípidos alcanzan un valor máximo tras 4 semanas y se mantienen durante 6-12 meses; bajas en sensibilidad y especifidad Enzimonoimunoanálisis Se dispone de un gran número de pruebas dotadas unas de sensibilidad y especifidades variables, las pruebas frente a la proteína adhesina P1 podrían ser las mas especificas Aglutinas frías La sensibilidad y la especifidad son bajas y se producen reacciones cruzadas con otros patógenos respiratorios, aunque se trata de la prueba mas utilizada no se recomienda su aplicación PCR (reacción en cadena de la polimerasa)

15. PCR Obtención de muestras en medio adecuado Inactivación por hervido durante 20 min En muestras viscosas se somete a tratamiento con N-acetil cisteína en un medio alcalino con agitación a Temperatura ambiente durante 30 min El ADN se extrae usando un kit comercial Wisar Genomics Se cuantifica el ADN mediante la medición de la absorvancia Se amplifican las regiones de los genes 16SrRNA empleando primer específicos y condiciones de ciclado descritos por mejuto Se realiza electroforesis en gel de agarosa al 2% y tinción de bromuro de etilo para visualizar los productos Figura 7: amplificación del gen 16SrRNA de M. pneumoniae en el carril 1 se muestra el marcador molecular 100pb en el carril 2 el control negativo, del 3-11 se muestran diluciones seriadas de ADN de M. pneumoniae

16. M e d i o s d e c u l t i v o La muestra se puede inocular e medios especiales complementados con sueros, extractos de levadura, glucosa, indicador de pH* Los organismo crecen lentamente, su tiempo de duplicación es 6 h Caldo SP4 (pH 7.5), Caldo PPLO** Agar SP4 (pH 7.5) Agar PPLO** *Adicionalmente **con extracto de levadura y suero de caballo

17. D i a g n o s t i c o d i f e r e n c i a l Cultivo bacteriano Medio liquido y solido Pruebas bioquímicas Fermentación de la glucosa Hemadsorción Β-hemolisina Reducción aeróbica del cloruro de trifeniltetrazolio Inhibición del crecimiento en presencia del antisuero homologo

18. Protocolo para el aislamiento de M. pneumoniae de muestras respiratorias

19. B i b l i o g r a f í a de Mycoplasma pneumoniae Molina López J. (2010) Mycoplasma. En Tay Zavala (editor) del libro Microbiología y parasitología médica pp. 169-172 México: Méndez editores Escobar M.F.,Pilar Delgado M., Jaramillo C., (2005) Detección de Mycoplasma pneumoniae mediante PCR–hibridación in vitro en niños con infección respiratoria. Revista del Instituto Nacional de Enfermedades Respiratorias, volumen (18) Carreazo Pariasca J. (2003) Fisiopatología de las infecciones por Mycoplasma pneumoniae. Paediatrica (5) 101-108 Bago (2003) Laboratory Diagnosis of Mycoplasma pneumoniae Infection recuperado el 24 de octubre del 2016 de: http://www.bago.com/BagoArg/Biblio/neumoweb211.htm

20. B i b l i o g r a f í a de Mycoplasma fermentans Facultad de medicina de la UNAM (2009) Micoplasmas patógenos para el humano, departamento de microbiología y parasitología Vol 52. Mexico: Media grapic Cercenado E., Cantón R. (2011) Recomendaciones de la Sociedad Española de Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica: Diagnóstico microbiológico de las infecciones por Mycoplasma. Recuperado el 5 noviembre del 2016 de : https://www.seimc.org/contenidos/documentoscientificos/procedimientosmicrobiologia/seimc- procedimientomicrobiologia40.pdf Washington C., Stephen D., William M., Elmer W., Gary W. Paul C. Schrenckenberger, Gail L. Woods (2008) Koneman: Diagnóstico Microbiológico.(6ta ed.) Editorial Médica Panamericana León Tello G. (1997)Tesis de maestría determinación de la capacidad migratoria de Mycoplasma fermentans en conejos infectados experimentalmente no publicado universidad autónoma de puebla

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